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이용수2
Ⅰ. 서 론 1Ⅱ. 재료 및 방법 41. 시료제조 41) 된장시료 42) 메탄올 추출물의 제조 42. 된장의 발효특성, 성분 분석 및 측정 51) pH 측정 52) 아미노태 및 암모니아태 질소 측정 53) 효소 활성도 측정 5(1) α-Amylase 활성도 측정 5(2) Protease 활성도 측정 64) 총 폴리페놀 함량 측정 65) 된장의 Isoflavone 분석 7(1) UHPLC/HR-MS/MS 분석을 위한 된장에서의 Isoflavone 추출 7(2) 된장의 Isoflavone 조성 분석 76) 된장의 Isoflavone 함량 분석 93. In vitro 항산화 및 항암효과 측정 111) DPPH radical 소거효과 측정 112) Raw 264.7 대식세포(정상세포)를 이용한 in vitro 된장 메탄올 추출물의 독성 측정 113) HT-29 인체 대장암세포에서의 in vitro 항암 효과 측정 12(1) MTT assay 12(2) RT-PCR을 이용한 대장암 관련 인자 mRNA 발현 분석 134) HT-29 인체 대장암세포를 이용한 5-Fluorouracil(5-FU)과 검정콩 된장의 in vitro 항암 효과 측정 14(1) MTT assay 14(2) RT-PCR을 이용한 대장암 관련 인자의 mRNA 발현 분석 144. C57BL/6J 마우스를 이용한 in vivo 대장암 예방 효과 실험 161) 실험동물 준비 및 군 구성 162) 시료의 투여 및 대장암 유발 163) 사망 및 임상증상 관찰 204) 체중측정 205) 혈청분리, 대장 길이 및 장기무게, 종양 갯수 측정 206) 대장 조직의 병리학적 관찰 217) 마우스 혈청을 이용한 Inflammation related genes의 측정 218) RT-PCR을 이용한 대장암 관련 인자의 mRNA 발현 분석 225. 통계분석 23Ⅲ. 결과 및 고찰 241. 된장의 발효특성, 성분 분석 및 함량 241) pH 242) 아미노태 및 암모니아태 질소 함량 243) 효소 활성도 측정 274) 총 폴리페놀 함량 측정 295) 된장의 Isoflavone 조성 316) 된장의 Isoflavone(daidzein, genistein) 함량 312. In vitro 항산화 및 항암효과 361) DPPH radical 소거효과 362) MTT assay 383) HT-29 인체 대장암 세포를 이용한 RT-PCR 결과 41(1) TNF-α, IL-6와 COX-2의 mRNA 발현 41(2) p21, p53과 Cyclin D1의 mRNA 발현 44(3) Bcl-2의 mRNA 발현 464) HT-29 인체 대장암세포를 이용한 5-Fluorouracil(5-FU)과 검정콩 된장의in vitro 항암 효과 48(1) MTT assay 48(2) RT-PCR을 이용한 in vitro 항암 효과 523. C57BL/6J 마우스를 이용한 in vivo 대장암 예방 효과 551) 식이를 이용한 대장암 예방효과 55(1) 체중, 장기 무게 및 대장 길이 55(2) 대장조직의 병리학적 분석 60(3) 혈청에서의 Pro-inflammatory cytokines의 양 62(4) 대장조직에서 mRNA 발현을 통한 in vivo 항암 효과 632) 경구투여를 이용한 대장암 예방효과 69(1) 체중, 장기 무게 및 대장 길이, 종양 개수 69(2) 대장조직의 병리학적 분석 76(3) 혈청에서의 Inflammatory related genes의 양 78(4) 대장조직에서 mRNA 발현을 통한 in vivo 항암 효과 81Ⅳ. 요약 및 결론 88참 고 문 헌 91Abstract 101
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