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학위논문
저자정보

Maftuna Shamshiddinova (충북대학교, 충북대학교 대학원)

지도교수
이용문
발행연도
2022
저작권
충북대학교 논문은 저작권에 의해 보호받습니다.

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이 논문의 연구 히스토리 (3)

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스핑고지질은 모든 세포막의 중요한 구성 요소이며 L-세린과 팔미토일- CoA가 축합되어 3-케토스핑가닌을 형성하는 소포체(ER)에서 시작되는 새로운 합성 경로를 통해 합성됩니다. 3-케토스핑가닌은 케토스핑가닌 환원효소, 세라마이드 합성효소(CerS) 및 디히드로세라마이드 불포화효소와 같은 효소를 포함하는 연속적인 단계에 의해 세라마이드(Cer)로 전환됩니다. 세라마이드는 스핑고미엘린과 보다 복잡한 글리코스핑고리피드 대사에 관여합니다. 최근에는 SPT 효소의 돌연변이로 인한 질병에서 C1-OH기가 결여된 새로운 세라마이드 종들이 관찰되고 있습니다. 표준 스핑고지질과 달리 비정형 스핑고지질은 효소 SPT에 의해 de novo 경로를 통해서만 합성될 수 있습니다. 이 효소는 pal-CoA를 L-세린 대신 L-알라닌 또는 L-글리신으로 촉매하여 데옥시- 또는 데옥시스핑가닌을 형성합니다. 결과적으로 세라마이드 합성효소(CerS)는 데옥시- 및 데옥시스핑가닌을 다음 데옥시- 및 데옥시세라마이드로 적극적으로 전환합니다. 비정형 스핑고지질은 C1-OH 기를 포함하지 않기 때문에 복합체를 형성할 수 없고 세포 구획에 축적될 수 없으며 나중에 시토크롬 P450 효소에 의해 천천히 제거됩니다. 세라마이드 신호전달 경로는 세포자연사, 세포 분화, 세포자멸괴사, 자가포식, ER 스트레스 및 세포 주기 정지에 관여합니다. 표준 스핑고지질과 달리 데옥시스핑고지질에 대해서는 알려진 바가 거의 없습니다. 증가된 DoxSL 수치는 유전성 감각 및 자율 신경병증 I형, 2형 당뇨병, 아토피 피부염 및 노화와도 관련이 있습니다.
이 연구에서는 세라마이드와 데옥시세라마이드의 비교 조직 분포, 세포 독성 특성, 데옥시스핑고리피드의 in vitro, ex vivo 및 in vivo 대사와 만성 신장 질환 및 아토피 피부염 동물 모델에서의 행동을 조사했습니다.
1장에서 LC-MS/MS 방법은 쥐 조직에서 데옥시스핑고지질과 스핑고지질을 식별하여 비교 스핑고지질 프로파일을 수행하기 위해 개발되었습니다. 확립된 방법은 선형성, 정확성, 반복성, LOD 및 LOQ 측면에서 검증되었습니다.
2장에서는 두 개의 서로 다른 포유류 세포 LLC-PK1 및 IEC-18에서 표준 및 비표준 스핑고리피드의 자유 형태 및 N-아실 사슬 연결 형태의 세포 독성 분석을 조사했습니다.
3장은 LLC-PK1 세포, 마우스 혈액 및 C57BL/6 마우스에서 연구된 스핑고지질 및 1-데옥시스핑고지질의 시험관내, 생체외 및 생체내 대사에 전념했습니다.
4장에서는 아데닌 치료로 유발된 만성 신장 질환의 동물 모델에서 스핑고지질 프로파일링을 설명합니다. 실험적인 생체 내 결과는 HK-2 세포에서 2,8-디하이드록시아데닌의 생체 외 적용에 의해 강화되었습니다. 스핑고지질 대사SPT, CerS 및 aSMase와 관련된 효소의 활성은 신장 조직과 HK-2 세포에서 연구되었습니다.
5장에서는 칼시포트리올로 유도된 아토피 피부염 마우스 모델의 스핑고리피드 변화를 다룹니다. 우리는 AD 귀에서 조직학적 실험을 통해 피부 변화를 조사했습니다. TSLP 수치를 측정하고 내인성 스핑고지질 축적을 LC-MS/MS 방법으로 측정하였습니다. 스핑고지질 대사에 대한 MC903 적용의 SPT, CerS 및 aSMase활성 측정에 중점을 둔 효소 분석에 의해 조사되었습니다.

목차

I. General introduction. 1
1. The important stages of lipidomics workflow. 1
2. Analytical tools in lipid profiling methods 2
3. Mass spectrometry application in lipidomics. 3
4. Sphingolipid metabolic pathway 6
5. Deoxysphingolipid metabolism. 7
II. Chapter 1 10
LC-MS/MS-method establishment for comparative profiling of sphingolipids and deoxysphingolipids in mouse tissues 10
1. Introduction 10
2. Materials and methods. 12
2.1. Chemicals 12
2.2. Sample preparation 12
2.3. Lipid extraction. 12
2.4. LC-MS/MS condition 14
2.5. Method validation. 14
2.6. Statistical analysis. 15
3. Results 15
4. Discussion 36
III. Chapter 2 42
Comparative cell cytotoxicity of sphingolipids and deoxysphingolipids 42
1. Introduction 42
2. Materials and methods. 43
2.1. Reagents 43
2.2 Methods. 43
3. Results. 44
4. Discussion. 47
IV. Chapter 3 50
Comparative metabolic rate of sphingolipids 50
1. Introduction. 50
2. Materials and methods 50
2.1. Reagents 51
2.2. Cell culture and in vitro metabolism of deoxysphingolipids 51
2.3. Preparation of standart solutions for i.v. injection 52
2.4. Comparative ex vivo metabolism of deoxysphingolipids and sphingolipids 52
2.5. In vivo comparative metabolism of sphingolipids 52
2.6. Lipid extraction. 52
2.7. LC-MS/MS conditions 53
2.8. Statistical analysis. 53
3. Results. 53
3.1. In vitro metabolism of atypical sphingolipids. 53
3.2. Comparative ex vivo metabolism of sphingolipids. 60
3.3. Comparative in vivo metabolism of sphingolipids. 66
4. Discussion. 76
V. Chapter 4. 80
Sphingolipid profiling in chronic kidney disease model 80
1. Introduction. 80
2. Materials and methods 82
2.1. Reagents 82
2.2. In vivo CKD induction and biospecimen collection. 82
2.3. Cell culture 82
2.4. Preparation of kidney samples 83
2.5. Determination of the plasma creatinine level. 83
2.6. Detection of tryptophan and kynurenine levels in plasma 83
2.7. Effects of 2,8-dihydroxyadenine on sphingolipids. 83
2.8. SPT activity assay. 84
2.9. CerS activity assay 85
2.10. aSMase activity assay 85
2.11. Lipid extraction. 86
2.12. LC-MS/MS conditions 87
2.13. Statistical analysis. 87
3. Results. 87
3.1. General data of an adenine-induced CKD rat model 87
3.2. Lipid alteration in plasma and kidney tissues. 89
3.3. Lipid alteration in HK-2 cells 93
3.4. SPT activity assay results 95
3.5. CerS activity results 96
3.6. aSMase activity results 101
4. Discussion. 102
VI. Chapter 5 107
Comparative study of (deoxy)sphingolipids in MC903 induced Atopic dermatitis disease model 107
1. Introduction. 107
2. Materials and methods 109
2.1. Reagents 109
2.2. MC 903 solution preparation. 109
2.3. Preparation of 1.2% Avertin solution for anesthesia 110
2.4. Atopic dermatitis induction. 110
2.5. Serum TSLP level assay 111
2.6. Histological examination. 112
2.7. SPT activity assay. 112
2.8. CerS activity assay 113
2.9. aSMase activity assay. 113
2.10. Lipid extraction. 113
2.11. LC-MS/MS analysis of ceramides 114
2.12. Statistical analysis. 114
3. Results. 114
3.1. Phenotypic and skin structure change in AD model. 114
3.2. Endogenous sphingolipid alteration in the MC-903 atopic dermatitis induced mice model. 116
3.3. SPT activity assay results. 122
3.4. CerS activity assay results. 123
3.5. aSMase activity assay results 125
4. Discussion. 126
VII. Conclusions. 129
VIII. Reference list. 131
Abstract in Korean 150
Acknowledgements 152

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