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말 6개 품종 192두를 대상으로 17개의 microsatellite DNA marker를 이용하여 유전자(DNA)형을 분석하여 비교한 결과 제주마에서 각 marker별로 대립유전자의 수는 5-10개(평균 7.35개)로 분포하였고 제주마에서 관찰된 대립유전자는 총 125개가 관찰되어 평균 좌위 당 7.35개로서 몽고마의 130개(평균 7.65개)보다는 낮은 수치였다. 또한 AHT5 marker에서 대립유전자 P, ASB23 marker에서 대립유전자 Q와 R, CA425 marker에서 대립유전자 H, HMS3 marker에서 대립유전자 S, HTC10 marker에서 대립유전자 J, LEX3 marker에서 대립유전자 J 등 6개 marker에서 7개의 특이 대립유전자가 관찰되었다. 관찰된 이형접합성(observed heterozygosity)과 기대된 이형접합성(expected heterozygosity)은 각각 0.429-0.905 (평균 0.703)와 0.387-0.841(평균 0.702)로 관찰되었고 다량정보량(PIC)은 0.354(HTG6)-0.816(LEX3)로서 평균 0.659로 나타났으며 17개 marker중 AHT4, AHT5, CA425, HMS2, HMS3, HTC10, LEX3, VHL20 marker 등이 다량정보량(PIC) 0.7 이상을 나타내었다. 17개 marker에 대한 전체 부권부정율(친부마 혹은 친모마 하나의 유전자형을 알고 있을 경우)을 제주마에 적용 시 99.99%로 나타났다.
말 6개 품종별로 분석하였을 때 평균 대립유전자의 수는 7.64개(몽고마)-4.23개(미 니츄어 말)로 분포하였고 17개 marker 전체에서는 153개의 대립유전자가 검출되었다. 품종별로 분석한 결과 기대된 이형접합성(expected heterozygosi)과 관찰된 이 형접합성(observed heterozygosi)은 각각 0.7950±0.0141(몽고마)-0.6751±0.0378(미니츄어 말), 0.7135 ±0.0180(제주경주마)-0.5621±0.0401(미니츄어 말)로 나타났다. 말 6개 품종을 17개 microsatellite marker로 분석한 결과 몽고마, 제주마, 제주경주마 등의 순으로 높은 유전적 다양성을 보였다. 제주마와 가장 가까운 유전적 유연 관계를 나타낸 집단은 몽고마로서 Da genetic distance에서 0.1517로 나타났고, 제주경주마와는 0.2628의 유전적 거리를 보였다.
말 6개 품종별로 분석하였을 때 평균 대립유전자의 수는 7.64개(몽고마)-4.23개(미 니츄어 말)로 분포하였고 17개 marker 전체에서는 153개의 대립유전자가 검출되었다. 품종별로 분석한 결과 기대된 이형접합성(expected heterozygosi)과 관찰된 이 형접합성(observed heterozygosi)은 각각 0.7950±0.0141(몽고마)-0.6751±0.0378(미니츄어 말), 0.7135 ±0.0180(제주경주마)-0.5621±0.0401(미니츄어 말)로 나타났다. 말 6개 품종을 17개 microsatellite marker로 분석한 결과 몽고마, 제주마, 제주경주마 등의 순으로 높은 유전적 다양성을 보였다. 제주마와 가장 가까운 유전적 유연 관계를 나타낸 집단은 몽고마로서 Da genetic distance에서 0.1517로 나타났고, 제주경주마와는 0.2628의 유전적 거리를 보였다.
목차
서론
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결과
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요약
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참고문헌
참고문헌 (25)
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Aranguren-Mendez, J., J. Jordana and M. Gomez. 2001. Genetic diversity in Spanish donkey breeds using microsatellite DNA markers. Genet. Sel. Evol. 33, 433-442.
Binns, M. M., N. G. Uolmes and A. M. Holliman. 1995. The identification of polymorphic microsatellite loci in the horse and their use in thoroughbred parentage testing. Brit. Vet. J. 151, 9-15.
Bowling, A. T., M. L. Eggleston-Scott, G. Byrns, R. S. Clark, S. Dileanis and E. Wictum. 1997. Validation of microsatellite markers for routine horse parentage testing. Anim. Genet. 28, 247-252.
Bozzini, M., D. Fantin, J. S. Ziegle, H. van Haeringen, W. Jacobs, M. Ketcham, M. Spencer and S. Bates. 1996. Automated equine paternity testing. Anim. Genet. 27, 32.
Breen, M., G. Lindgren, M. M. Binns, J. Norman, Z. Irvin, K. Bell, K. Sandberg and H. Ellegren. 1997. Genetical and physical assignments of equine microsatellites-first integration of anchored markers in horse genome mapping. Mamm. Genome 8, 267-273.
Binns, M. M., N. G. Uolmes and A. M. Holliman. 1995. The identification of polymorphic microsatellite loci in the horse and their use in thoroughbred parentage testing. Brit. Vet. J. 151, 9-15.
Bowling, A. T., M. L. Eggleston-Scott, G. Byrns, R. S. Clark, S. Dileanis and E. Wictum. 1997. Validation of microsatellite markers for routine horse parentage testing. Anim. Genet. 28, 247-252.
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Breen, M., G. Lindgren, M. M. Binns, J. Norman, Z. Irvin, K. Bell, K. Sandberg and H. Ellegren. 1997. Genetical and physical assignments of equine microsatellites-first integration of anchored markers in horse genome mapping. Mamm. Genome 8, 267-273.
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