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When paraquat was added to the bacterial membrane or mitochondrial suspension, the mixture turned dark blue, but the color was disappeared by aeration. The same phenomenon was seen when electrons were supplied to the paraquat. Blue color appeared from near the cathode, and then spreaded to whole transit system. Coloration was accelerated by addition of alkali, but the color was reduced by addition of acid or oxygen. Paraquat exhibited absorption at ultraviolet region by electron tranfer at the concentrations as low as 1.0 mM which did not exert difficulty in showing color reaction. Paraquat caused the increase of the optical density at 340 ㎚ by electron transit, and an aspect of that had a strong resemblance to NADH. The acute toxic action of paraquat seemes to depend on inhibition of energy metabolism cased by paraquat action of electron donor and acceptor.
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Bhatnagar, R. S. and Hussaim, M. Z. 1979. Involvement of superoxide in the paraquat-induced enhancement of lung collagen synthesis in organ culture. Biochem. Biophys. Res. Commun. 819, 71-76.
Bowles, M.R., Mulbern, T. D., Gordon, R. B., Inglis, H. R., Sharpe, I. A., Cogill, J. L. and Pond, S. M. 1997. Herbicidespecific single chain antibody engineering for use in poisoning therapy. J. Biochem. 122(1), 101-108.
Thanos I. C. G. and Simon, H. 1987. Electro-enzymic viologenmediated streospecefic reduction of 2-enoates with free and immobilized enoate reductase on cellulose filters or modified carbon electrodes. J. Biotechnol. 6(1), 13-29.
Bus, J. S. Aust, S. D. and Gibson, J. E. 1975. A possible mechanism for paraquat toxicity. Res. Commun. Pathol. Pharmacol. 31, 31-38.
Chun, J. C., Ma, S. Y., Kim, S. E. and Lee, H. J 1997. Physiological responses of Rhehmannia glutinosa to paraquat and its tolerance mechanism. Pestic. Biochem. Physiol. 59, 51-63.
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